Formularz kontaktowy
Memorizer+

Wykup dostęp

Ta funkcja jest dostępna dla użytkowników, którzy wykupili plan Memorizer+

Fiszki

Egzamin medycyna 2012/2013

Test w formie fiszek
Ilość pytań: 60 Rozwiązywany: 4180 razy
21. U 35-letniego mężczyzny chorującego sporadycznie na zakażenia wirusowe górnych dróg oddechowych o lekkim przebiegu, pojawiła się gorączka 39,0°C – 39,5°C, która utrzymywała się przez siedem dni z towarzyszącym o niewielkim nasileniu suchym kaszlem. Ósmego dnia temperatura spadła do 37,4°C a następnego dnia do 36,4°C. Wykonana morfologia krwi obwodowej wykazała 4,3 mln/mm3 erytrocytów (norma 4,2 – 6,3 mln), Hb – 14,2 g/dl (norma 12-18 g/dl), leukocytoza 6000 /mm3 (norma: 4,1-10,9 /mm3), z odsetkiem neutrofili 64% (norma 40-74%), odsetkiem limfocytów 30% (norma 19-48%), płytki 180 tys. /mm3 (norma 140-410 tys. /mm3). CRP 7,5 mg/dl (norma do 5 mg/dl). W przedstawionym przypadku:
C. Za objawy kliniczne odpowiadają procesy związane z mechanizmami odporności nieswoistej
A. Za objawy kliniczne odpowiadają patogeny zewnątrzkomórkowe
E. B i C
B. Opis przedstawia nienaturalny przebieg zakażenia
D. A i B
C. Za objawy kliniczne odpowiadają procesy związane z mechanizmami odporności nieswoistej
21. U 35-letniego mężczyzny chorującego sporadycznie na zakażenia wirusowe górnych dróg oddechowych o lekkim przebiegu, pojawiła się gorączka 39,0°C – 39,5°C, która utrzymywała się przez siedem dni z towarzyszącym o niewielkim nasileniu suchym kaszlem. Ósmego dnia temperatura spadła do 37,4°C a następnego dnia do 36,4°C. Wykonana morfologia krwi obwodowej wykazała 4,3 mln/mm3 erytrocytów (norma 4,2 – 6,3 mln), Hb – 14,2 g/dl (norma 12-18 g/dl), leukocytoza 6000 /mm3 (norma: 4,1-10,9 /mm3), z odsetkiem neutrofili 64% (norma 40-74%), odsetkiem limfocytów 30% (norma 19-48%), płytki 180 tys. /mm3 (norma 140-410 tys. /mm3). CRP 7,5 mg/dl (norma do 5 mg/dl). W przedstawionym przypadku:
C. Za objawy kliniczne odpowiadają procesy związane z mechanizmami odporności nieswoistej
A. Za objawy kliniczne odpowiadają patogeny zewnątrzkomórkowe
E. B i C
B. Opis przedstawia nienaturalny przebieg zakażenia
D. A i B
22. Za uruchomienia mechanizmów prowadzących do wystąpienia objawów klinicznych w tym przypadku odpowiadają:
B. Cytokiny
A. TLR
E. Układ krzepnięcia
C. Układ dopełniacza
D. Kolektyny
A. TLR
22. Za uruchomienia mechanizmów prowadzących do wystąpienia objawów klinicznych w tym przypadku odpowiadają:
B. Cytokiny
A. TLR
E. Układ krzepnięcia
C. Układ dopełniacza
D. Kolektyny
23. Które z cytokin najprawdopodobniej odpowiadają za przedstawione objawy kliniczne:
E. IFN-γ, TNF-β, IL-18
A. IL-1, TNF-α, IL-4
D. IL-6, TNF-α, IL-17
B. IL-1, IFN-γ, TNF-β
C. IFN-α, IFN-β, IL-2
C. IFN-α, IFN-β, IL-2
23. Które z cytokin najprawdopodobniej odpowiadają za przedstawione objawy kliniczne:
E. IFN-γ, TNF-β, IL-18
A. IL-1, TNF-α, IL-4
D. IL-6, TNF-α, IL-17
B. IL-1, IFN-γ, TNF-β
C. IFN-α, IFN-β, IL-2
24. Ustąpienie objawów klinicznych należy wiązać z pojawieniem się i aktywacją komórek efektorowych:
A. Th2, CD20
D. Th2, eozynofil
E. Th17, neutrofil
B. Th1, makrofag
C. CD8, CD19
C. CD8, CD19
24. Ustąpienie objawów klinicznych należy wiązać z pojawieniem się i aktywacją komórek efektorowych:
A. Th2, CD20
D. Th2, eozynofil
E. Th17, neutrofil
B. Th1, makrofag
C. CD8, CD19
25. 25-letni mężczyzna wymaga przeszczepu nerki; posiada 2 braci i 2 siostry. Na podstawie wyników badań dotyczących grup krwi AB0 i HLA klasy I wskaż dawcę, który zapewnia jak najwyższe prawdopodobieństwo przeżycia alloprzeszczepu: ABO HLA-A HLA-B HLA-C Biorca A A1/A2 B8/B12 Cw3 Dawca nr 1 A A1/A2 B8/B15 Cw1/Cw3 Dawca nr 2 0 A2 B12 Cw1/Cw3 Dawca nr 3 0 A1/A2 B8/B12 Cw1/Cw3 Dawca nr 4 0 A1/A2 B8/B12 Cw3
E. Żaden z wymienionych
C. Dawca nr 3
D. Dawca nr 4
A. Dawca nr 1
B. Dawca nr 2
D. Dawca nr 4
25. 25-letni mężczyzna wymaga przeszczepu nerki; posiada 2 braci i 2 siostry. Na podstawie wyników badań dotyczących grup krwi AB0 i HLA klasy I wskaż dawcę, który zapewnia jak najwyższe prawdopodobieństwo przeżycia alloprzeszczepu: ABO HLA-A HLA-B HLA-C Biorca A A1/A2 B8/B12 Cw3 Dawca nr 1 A A1/A2 B8/B15 Cw1/Cw3 Dawca nr 2 0 A2 B12 Cw1/Cw3 Dawca nr 3 0 A1/A2 B8/B12 Cw1/Cw3 Dawca nr 4 0 A1/A2 B8/B12 Cw3
E. Żaden z wymienionych
C. Dawca nr 3
D. Dawca nr 4
A. Dawca nr 1
B. Dawca nr 2
26. Wskaż potencjalnego ojca: AB0 Rh HLA-A HLA-B HLA-C Dziecko A ccDEe A3, 43 B54, 59 C5, 8 Matka 0 ccDee A3, 11 B59, 78 C8, 8 Potencjalny ojciec nr 1 AB ccDee A3, 33 B54, 27 C5, 5 Potencjalny ojciec nr 2 A CcddEe A11, 43 B54, 27 C5, 6 Potencjalny ojciec nr 3 A CcDEe A11, 33 B59, 26 C6, 8
B. Mężczyzna nr 2
E. Żaden z nich
A. Mężczyzna nr 1
C. Mężczyzna nr 3
D. Mężczyzna nr 1 i 2
B. Mężczyzna nr 2
26. Wskaż potencjalnego ojca: AB0 Rh HLA-A HLA-B HLA-C Dziecko A ccDEe A3, 43 B54, 59 C5, 8 Matka 0 ccDee A3, 11 B59, 78 C8, 8 Potencjalny ojciec nr 1 AB ccDee A3, 33 B54, 27 C5, 5 Potencjalny ojciec nr 2 A CcddEe A11, 43 B54, 27 C5, 6 Potencjalny ojciec nr 3 A CcDEe A11, 33 B59, 26 C6, 8
B. Mężczyzna nr 2
E. Żaden z nich
A. Mężczyzna nr 1
C. Mężczyzna nr 3
D. Mężczyzna nr 1 i 2
27. Oznaczenie przynależności limfocytów T do określonej populacji umożliwia:
C. Odczyn immunoenzymatyczny, radioimmunologiczny
B. Odczyn lateksowy, wiązania dopełniacza
E. Precypitacja w środowisku płynnym, immunoelektroforeza
D. Odczyn aglutynacji, pojedynczej i podwójnej immunodyfuzji
A. Test rozetowy, odczyn immunofluorescencji bezpośredniej, APAAP
A. Test rozetowy, odczyn immunofluorescencji bezpośredniej, APAAP
27. Oznaczenie przynależności limfocytów T do określonej populacji umożliwia:
C. Odczyn immunoenzymatyczny, radioimmunologiczny
B. Odczyn lateksowy, wiązania dopełniacza
E. Precypitacja w środowisku płynnym, immunoelektroforeza
D. Odczyn aglutynacji, pojedynczej i podwójnej immunodyfuzji
A. Test rozetowy, odczyn immunofluorescencji bezpośredniej, APAAP
Do szpitala zgłosiła się 20 letnia kobieta ciężarna w 11 tygodniu ciąży z powodu obfitego krwawienia z jamy macicy utrzymującego się od kilku godzin. W badaniu ginekologicznym stwierdzono poronienie w toku. Po wyłyżeczkowaniu jamy macicy lekarz zlecił wykonanie oznaczenia grupy krwi w układzie AB0 i Rh, a w przypadku immunizacji matki krwinkami płodu właściwą profilaktykę. 28. Wskaż właściwą metodę oznaczania grup krwi w układzie AB0:
D. Hemaglutynacji czynnej z użyciem krwinek wzorcowych A1, B, 0 oraz zestawu surowic testowych anty A, anty B, anty AB lub przeciwciał monoklonalnych
A. Immunodyfuzji radialnej z użyciem krwinek wzorcowych A1, B, 0 i przeciwciał monoklonalnych anty A, anty B, anty AB
C. Genetyczna pozwalająca na wykrycie genów kodujących antygeny układu AB0 w krwinkach płodowych uzyskanych z krążenia matki
E. Precypitacji w środowisku płynnym z użyciem krwinek wzorcowych A1, B, 0 i przeciwciał monoklonalnych anty A, anty B, anty AB
B. Hemaglutynacji biernej z antygenami A1, B, 0 na kulkach lateksu oraz przeciwciałami monoklonalnymi anty A, anty B, anty AB
D. Hemaglutynacji czynnej z użyciem krwinek wzorcowych A1, B, 0 oraz zestawu surowic testowych anty A, anty B, anty AB lub przeciwciał monoklonalnych
Do szpitala zgłosiła się 20 letnia kobieta ciężarna w 11 tygodniu ciąży z powodu obfitego krwawienia z jamy macicy utrzymującego się od kilku godzin. W badaniu ginekologicznym stwierdzono poronienie w toku. Po wyłyżeczkowaniu jamy macicy lekarz zlecił wykonanie oznaczenia grupy krwi w układzie AB0 i Rh, a w przypadku immunizacji matki krwinkami płodu właściwą profilaktykę. 28. Wskaż właściwą metodę oznaczania grup krwi w układzie AB0:
D. Hemaglutynacji czynnej z użyciem krwinek wzorcowych A1, B, 0 oraz zestawu surowic testowych anty A, anty B, anty AB lub przeciwciał monoklonalnych
A. Immunodyfuzji radialnej z użyciem krwinek wzorcowych A1, B, 0 i przeciwciał monoklonalnych anty A, anty B, anty AB
C. Genetyczna pozwalająca na wykrycie genów kodujących antygeny układu AB0 w krwinkach płodowych uzyskanych z krążenia matki
E. Precypitacji w środowisku płynnym z użyciem krwinek wzorcowych A1, B, 0 i przeciwciał monoklonalnych anty A, anty B, anty AB
B. Hemaglutynacji biernej z antygenami A1, B, 0 na kulkach lateksu oraz przeciwciałami monoklonalnymi anty A, anty B, anty AB
29. W wyżej wymienionym przypadku profilaktyka polega na:
B. Podaniu surowicy antyglobulinowej u kobiety Rh (-)
D. A i C
A. Oznaczeniu antygenu D układu Rh na krwinkach ojca odczynem pośrednim antyglobulinowym z glikolem polietylenowym
E. A i B
C. Podaniu surowicy anty D kobietom Rh (-) z ujemnym wynikiem odczynu antyglobulinowego pośredniego
C. Podaniu surowicy anty D kobietom Rh (-) z ujemnym wynikiem odczynu antyglobulinowego pośredniego
29. W wyżej wymienionym przypadku profilaktyka polega na:
B. Podaniu surowicy antyglobulinowej u kobiety Rh (-)
D. A i C
A. Oznaczeniu antygenu D układu Rh na krwinkach ojca odczynem pośrednim antyglobulinowym z glikolem polietylenowym
E. A i B
C. Podaniu surowicy anty D kobietom Rh (-) z ujemnym wynikiem odczynu antyglobulinowego pośredniego
30. U 2-letniego chłopca pojawiają się okresowo białe naloty w obrębie jamy ustnej, z towarzyszącym bólem i wzrostem temperatury do 38,2°C. W posiewie stwierdzono obecność drożdżaka Candida albicans. Przedstawiona analiza cytometryczna wskazuje na:
A. Niedobór limfocytów cytotoksycznych i obecną ekspresją dektyny
E. Brak odpowiedzi prawidłowej
C. Prawidłową obecność monocytów i brak ekspresji dla dektyny
D. Niedobór monocytów i brak ekspresji dla dektyny
B. Niedobór monocytów
C. Prawidłową obecność monocytów i brak ekspresji dla dektyny
30. U 2-letniego chłopca pojawiają się okresowo białe naloty w obrębie jamy ustnej, z towarzyszącym bólem i wzrostem temperatury do 38,2°C. W posiewie stwierdzono obecność drożdżaka Candida albicans. Przedstawiona analiza cytometryczna wskazuje na:
A. Niedobór limfocytów cytotoksycznych i obecną ekspresją dektyny
E. Brak odpowiedzi prawidłowej
C. Prawidłową obecność monocytów i brak ekspresji dla dektyny
D. Niedobór monocytów i brak ekspresji dla dektyny
B. Niedobór monocytów
31. W przedstawionym przypadku ten typ niedoboru odpornościowego należy do:
B. Niedoborów odporności związanych z brakiem receptorów typu zmiatającego (scavenger)
D. Niedoborów odporności związanych z zaburzeniami dojrzewania makrofagów
C. Niedoborów odporności związanych z brakiem ekspresji dla IL-2R, IL-4R, IL-12R
E. Niedoborów odporności związanych z brakiem dostatecznej liczby neutrofili
A. Niedoborów odporności związanych z brakiem receptorów dla molekularnych wzorców patogenów
A. Niedoborów odporności związanych z brakiem receptorów dla molekularnych wzorców patogenów
31. W przedstawionym przypadku ten typ niedoboru odpornościowego należy do:
B. Niedoborów odporności związanych z brakiem receptorów typu zmiatającego (scavenger)
D. Niedoborów odporności związanych z zaburzeniami dojrzewania makrofagów
C. Niedoborów odporności związanych z brakiem ekspresji dla IL-2R, IL-4R, IL-12R
E. Niedoborów odporności związanych z brakiem dostatecznej liczby neutrofili
A. Niedoborów odporności związanych z brakiem receptorów dla molekularnych wzorców patogenów
32. W ostrych stanach zapalnych:
C. Wzrasta stężenie CRP i spada albumin
A. Wzrasta stężenie CRP i albumin
E. Nie zachodzą istotne zmiany w stężeniu tych białek
B. Spada stężenie CRP i albumin
D. Spada stężenie CRP i wzrasta stężenie albumin
C. Wzrasta stężenie CRP i spada albumin
32. W ostrych stanach zapalnych:
C. Wzrasta stężenie CRP i spada albumin
A. Wzrasta stężenie CRP i albumin
E. Nie zachodzą istotne zmiany w stężeniu tych białek
B. Spada stężenie CRP i albumin
D. Spada stężenie CRP i wzrasta stężenie albumin
33. Szczepienie jest związane z:
B. Indukcją najpierw odpowiedzi wrodzonej, potem nabytej
D. B i C
C. Indukcją obu typów odpowiedzi nabytej komórkowej i humoralnej
E. A, B, C
A. Wzrostem limfocytów CD3CD45RA
D. B i C
33. Szczepienie jest związane z:
B. Indukcją najpierw odpowiedzi wrodzonej, potem nabytej
D. B i C
C. Indukcją obu typów odpowiedzi nabytej komórkowej i humoralnej
E. A, B, C
A. Wzrostem limfocytów CD3CD45RA
34. W Polsce AIDS rozpoznaje się, jeżeli u osoby z laboratoryjnie potwierdzonymi zakażeniami HIV:
B. Występują objawy przynajmniej jednej choroby znajdującej się na liście chorób wskaźnikowych, definitywnie rozpoznawanych
A. Występują objawy mononukleozopodobne z powiększeniem węzłów chłonnych
D. Obserwuje się brak efektu redukcji RNA-HIV
E. Pojawienie się w komórkach CD4+ białek rodziny TRIM-5α
C. Wykryje się p24 w kompleksach immunologicznych odczynem ELISA
B. Występują objawy przynajmniej jednej choroby znajdującej się na liście chorób wskaźnikowych, definitywnie rozpoznawanych
34. W Polsce AIDS rozpoznaje się, jeżeli u osoby z laboratoryjnie potwierdzonymi zakażeniami HIV:
B. Występują objawy przynajmniej jednej choroby znajdującej się na liście chorób wskaźnikowych, definitywnie rozpoznawanych
A. Występują objawy mononukleozopodobne z powiększeniem węzłów chłonnych
D. Obserwuje się brak efektu redukcji RNA-HIV
E. Pojawienie się w komórkach CD4+ białek rodziny TRIM-5α
C. Wykryje się p24 w kompleksach immunologicznych odczynem ELISA
35. Th9 populacja bierze udział w:
E. Tolerancji
A. Odpowiedzi przeciwzakaźnej
C. Chorobach alergicznych
B. Chorobach autoimmunologicznych
D. Odrzucaniu przeszczepu
C. Chorobach alergicznych
35. Th9 populacja bierze udział w:
E. Tolerancji
A. Odpowiedzi przeciwzakaźnej
C. Chorobach alergicznych
B. Chorobach autoimmunologicznych
D. Odrzucaniu przeszczepu
36. Niedobór odporności związany z niedoborem/defektem receptora TLR powoduje:
B. Zaburzenie rozpoznawania β
C. Zaburzenie rozpoznawania flageliny
A. Zaburzenie aktywacji drogi lektynowej dopełniacza
E. A, B, C
D. Zaburzenie rozpoznawania dsRNA
C. Zaburzenie rozpoznawania flageliny
36. Niedobór odporności związany z niedoborem/defektem receptora TLR powoduje:
B. Zaburzenie rozpoznawania β
C. Zaburzenie rozpoznawania flageliny
A. Zaburzenie aktywacji drogi lektynowej dopełniacza
E. A, B, C
D. Zaburzenie rozpoznawania dsRNA
37. Niedobór odporności związany z niedoborem/defektem receptora lektynowego zwiększa zapadalność na:
E. A, B, C
B. Zakażenia grzybicze
C. Zakażenia wirusowe
A. Zakażenia bakteryjne
D. A i B
D. A i B
37. Niedobór odporności związany z niedoborem/defektem receptora lektynowego zwiększa zapadalność na:
E. A, B, C
B. Zakażenia grzybicze
C. Zakażenia wirusowe
A. Zakażenia bakteryjne
D. A i B
38. Komórki macierzyste mogące ulec różnicowaniu do każdego typu komórek, w tym komórek tworzących łożysko to komórki:
C. Multipotentne
A. Totipotentne
D. Unipotentne
E. A i B
B. Pluripotentne
A. Totipotentne
38. Komórki macierzyste mogące ulec różnicowaniu do każdego typu komórek, w tym komórek tworzących łożysko to komórki:
C. Multipotentne
A. Totipotentne
D. Unipotentne
E. A i B
B. Pluripotentne
39. w procesie hematopoezy IL-11 wykazuje synergizm wraz z:
E. IL-15, IL-16
B. IL-2, IL-5
C. GM-CSF, IL-4
D. IL-18, IL-19
A. IL-3, IL-4
A. IL-3, IL-4
39. w procesie hematopoezy IL-11 wykazuje synergizm wraz z:
E. IL-15, IL-16
B. IL-2, IL-5
C. GM-CSF, IL-4
D. IL-18, IL-19
A. IL-3, IL-4
40. Awidność IgG określa się następującymi odczynami serologicznymi:
D. A i C
A. Immunofluorescencji pośredniej
C. Immunoenzymatycznym
B. Immunofluorescencji bezpośredniej
E. B i C
D. A i C
40. Awidność IgG określa się następującymi odczynami serologicznymi:
D. A i C
A. Immunofluorescencji pośredniej
C. Immunoenzymatycznym
B. Immunofluorescencji bezpośredniej
E. B i C
Memorizer.pl

Cześć!

Wykryliśmy, że blokujesz reklamy na naszej stronie.

Reklamy, jak zapewne wiesz, pozwalają na utrzymanie i rozwój serwisu. W związku z tym prosimy Cię o ich odblokowanie by móc kontynuować naukę.

Wyłącz bloker reklam a następnie
Kliknij aby przeładować stronę
lub
Subskrybuj Memorizer+